离心机在预冷状态时，离心机盖必须关闭，离心结束后取出转头要倒置于实验台上，擦干腔内余水，离心机盖处于打开状态。 

1. 转头在预冷时转头盖可摆放在离心机的平台上，或摆放在实验台上，千万不可不拧紧浮放在转头上，因为一旦误启动，转头盖就会飞出，造成事故！ 

2. 转头盖在拧紧后一定要用手指触摸转头与转盖之间有无缝隙，如有缝隙要拧开重新拧紧，直至确认无缝隙方可启动离心机。 

3. 在离心过程中，操作人员不得离开离心机室，一旦发生异常情况操作人员不能关电源POWER），要按STOP。在预冷前要填写好离心机使用记录。 

4. 不得使用伪劣的离心管，不得使用老化、变形、有裂纹的离心管。 

5. 在节假日和晚间最后一个使用离心机例行安全检查后方能离去。

6. 在仪器使用过程中发生机器故障，部件损坏情况时要及时与技术人员联系。 

运行注意事项 

为了确保安全和离心效果，仪器必须放置在坚固水平的台面上，工程塑料盖门上不得放置任何物品；样品必须对称放置，并在开机前确保已拧紧螺母。

使用前应检查转子是否有伤痕、腐蚀等现象，同时应对离心杯做裂纹、老化等方面的检查，发现有疑问立即停止使用，并与厂方联系；开机运转前请务必拧紧转头的压紧螺帽，以免高速旋转的转头飞出造成事故。 转速设定不得超过最高转速，以确保机器安全运转。

使用中如果出现 0.00或其他数字，机器不运转，应关机断电，10秒后重新开机，待所设转速显示后，再按运转键，机器将照常运转。 

如需分离样品的比重超过 1.2克/立方厘米，最高转速N必须按下式修正：N=N MAX ＊（1.2/样品比重） 1/2 ，N MAX =转子极限转速。 不得在机器运转过程中或转子未停稳的情况下打开盖门，以免发生事故。 离心杯必须等量灌注样品，切不要使转头在不平衡的状况下运行。 离心机一次运行最好不要超过 60分钟。 离心机必须可靠接地；机器不使用，请拔掉电源插头。 

使用注意事项 

※1、离心机在运转时，不得移动离心机。 

※2、安放离心机的地面应坚实平整，二只调平螺杆调节使离心机与地面接触和均匀受力，以免产生振动。 

※3、离心管加液应称量平衡，若加液差异过大运转时会产生大的振动，此时应停机检查，使加液符合要求，离心 试管必须成偶数对称放入。 

※4、若运行时有离心试管破裂，会引起较大振动应立即停机处理。 

※5、每次停机后再开机的时间间隔不得少于5分钟，以免压缩机堵转而损坏。 

※6、每次离心完成后，必须将转子取出，否则长时间放在轴上，可能锈死，转子会取不出而造成离心机整机报废。 

※7、电源必须有接地线。 

※8、本机转子使用寿命为三年，过期应更换转子。 

※9、所有转子不能超过其最高转速使用。 

离心机 是借离心力分离液相非均一体系的设备。根据物质的沉降系数、质量、密度等的不同，应用强大的离心力使物质分离、浓缩和提纯的方法称为离心。一般说， 离心机转速在 20 000r/min 以上的称为超速离心。

离心技术，特别是超速离心技术是分子生物学、生物化学研究和工业生产中不可缺少的手段。 1924 年 T.Svedberg 和 Rinde 研制出世界上第一台涡轮超速离心机以来，发展非常迅速，现在已广泛地应用到科学研究和生产的各个领域。现在离心机转头最高转速已达 100000 r/min ，最大离心力达 700 000 g 。

 离心机 作为一种手段，具有许多优点。例如，超速离心可在低温下操作，保护了生物大分子的活性。制备型的离心机负载量大，一次可分离提纯几克样品，比层析、电泳上的样品量大得多。

分析离心机不仅可测物质的分子量，还可检验物质的纯度、构象、沉降系数等。因此离心技术在生物学研究中占有重要的地位，是分离、纯化细胞、病毒、蛋白、核酸和酶的最方便最有效的工具。

 ( 一 ) 离心原理 当含有细小颗粒的悬浮液静置不动时，由于重力场的作用使得悬浮的颗粒逐渐下沉。粒子越重，下沉越快，反之密度比液体小的粒子就会上浮。微粒在重力场下移动的速度与微粒的大小、形态和密度有关，并且又与重力场的强度及液体的粘度有关。象红血球大小的颗粒，直径为数微米，就可以在通常重力作用下观察到它们的 沉降过程。 此外，物质在介质中沉降时还伴随有扩散现象。扩散是无条件的绝对的。扩散与物质的质量成反比，颗粒越小扩散越严重。而沉降是相对的，有条件的，要受到外力才能运动。沉降与物体重量成正比，颗粒越大沉降越快。对小于几微米的微粒如病毒或蛋白质等，它们在溶液中成胶体或半胶体状态，仅仅利用重力是不可能观察到沉降过程的。因为颗粒越小沉降越慢，而扩散现象则越严重。所以需要利用离心机产生强大的离心力，才能迫使这些微粒克服扩散产生沉降运动。 离心就是利用离心机转子高速旋转产生的强大的离心力，加快液体中颗粒的沉降速度，把样品中不同沉降系数和浮力密度的物质分离开。离心力 (F) 的大小取决于离心转头的角速度 ( ω ， r/min) 和物质颗粒距离心轴的距离 (r ， cm) 。它们的关系是： F ＝ ω 2R 为方便起见， F 常用相对离心力也就是地心引力的倍数表示。即把 F 值除以重力加速度 g ( 约等于9.8m/s2.) 得到离心力是重力的多少倍，称作多少个 g 。例如离心机转头平均半径是 6cm ，当转速是 60 000 r/min 时，离心力是 240 000 × g ，表示此时作用在被离心物质上的离心力是日常地心引力的 24 万倍。因此，转速 r/min 和离心力 g 值之间并不是成正比关系，还和半径有关。同样的转速，半径大一倍，离心力 (g 值 ) 也大一倍。转速 (r/min) 和离心力 (g 值 ) 之间的关系可用下式换算： 式中： r 为半径 (cm) ， g 为离心力 (g 值 ) 

 （二 ) 超速离心机的离心方法 用离心方法分离生物大分子和亚细胞物质的基本原理是根据它们在液体介质中或者沉降速度不同而形成不同的区带，或者它们的密度不同而停留在液体介质中不同的位置而把它们一一分开。前者是沉降速度法，应用该法时液体介质的最大密度要小于样品中最小颗粒的密度，离心时选用高转速和短时间；后者是沉降平衡法，应用该法时液体介质的最大密度要大于样品中最小颗粒的密度，离心时选用较低转速和较长时间。

实际操作有几种形式： 

 1. 差速离心这种方法是选择不同转速的离心，分别分离各个不同组分。例如先用低速沉降大颗粒和上清液，在高速离心上清沉降中等颗粒，最后超速离心上清沉降小颗粒。采用逐级提高离心力分离上情液的方法，把不同大小的颗粒分开。 这种方法比较简单，方便。分离的组份沉到管底，因此可以迅速浓缩所要的组份，减少体积。但回收率和纯度是有矛盾的，要提高回收率，势必提高转速或延长离心时间，这样大小相近的颗粒也会沉到管底。因此该法多用于粗提纯或初步浓缩样品。 

 2. 速度区带 ( 或速度梯度 ) 离心 本法是将样品放在一个连续的密度梯度液体上，通过离心，大颗粒沉降快，小颗粒沉降慢。经过一段时间，相同的颗粒就在同一深度形成一条带子，因此把各种组份分开来。它适用于分离密度相同、而大小不同的物质，如不同的蛋白质组份密度都差不多，但分子量不一样，用本法很容易将其分 开。但对密度不同、大小类似的物质则不易分离。蔗糖梯度是一种常用的介质。用不同浓度的蔗糖溶液 (5%-60%) 配成梯度，用于梯度离心。再分别进行收集处于不同区带里的各个组份。 

（三）保养注意事项 

1.清洁离心机腔体和转头，并擦干腔内冷凝水。 

2.使用完后要打开门，直至腔内恢复常温。 

3.离心之前要平衡样品。 

4.离心之后要注意消毒和灭菌。 

5.根据需要选用tubes/bottles、adapters以及spacers，根据要求加样品量。 

6.必要时预冷转子。 

7.转头的维护和存放,注意保护底部的计数环。 

8.工具的准确使用和转头的正确安装。